嘌呤霉素（Puromycin）是由白黑链霉菌（Streptomyces alboniger）产生的一种氨基糖苷类抗生素，可干扰核糖体上的肽转运，造成翻译终止，进而抑制蛋白质合成，对革兰氏阳性菌、动物细胞、昆虫细胞均有杀伤作用。

链霉菌中的嘌呤霉素N-乙酰转移酶（PAC），赋予机体对嘌呤霉素产生抗性。这一特性可用于筛选特定携带pac基因的稳定转染细胞株。嘌呤霉素作用迅速，在低浓度下即可快速导致细胞死亡，一般筛选周期为一周。贴壁哺乳细胞对浓度为1 µg/mL - 10 µg/mL的嘌呤霉素敏感，悬浮细胞一般为0.5 µg/mL - 2 µg/mL。

固态-20℃保存，至少一年有效。溶液-20℃避光保存，有效期6个月。溶液应避免反复冻融。

嘌呤霉素有效筛选浓度跟细胞类型、生长状态、细胞密度、细胞代谢情况及细胞所处细胞周期位置等有关。为了筛选到稳定表达细胞株，需要确定杀死未转染或未转导细胞的嘌呤霉素的最低浓度。初次实验建议建立适合自身实验体系的杀死曲线（Kill curve），即剂量-作用曲线。 1.杀死曲线的确立： (1) 以24孔板为例，在板内以5 - 8×104 cells/孔的密度铺板，37℃孵育过夜。 (2) 用含不同浓度嘌呤霉素的新鲜培养基换液（如0 µg/mL - 15 µg/mL，至少设置5个浓度梯度），37℃继续孵育细胞。 (3) 24h后继续更换新鲜的筛选培养基，并观察细胞存活率。 (4) 此后根据细胞生长状态，约2 - 3天更换新鲜的筛选培养基。 (5) 每日观察存活细胞率，从而确定抗生素筛选开始4 - 6天内有效杀死非转染或所有非转导细胞的药物最低浓度。 2.转染细胞株筛选： (1) 细胞转染含有pac基因的质粒48h后，将细胞（原样或稀释）置于含有适当浓度嘌呤霉素（一般最低浓度为杀死曲线确定的最低浓度）的新鲜培养基中培养。 注意：当细胞处于分裂活跃期时，抗生素作用最明显。细胞过于密集，抗生素产生的效力会明显下降。最好进行细胞分盘使其密度不超过25%。 (2) 每隔2 - 3天，移除和更换含有嘌呤霉素的培养基。 (3) 筛选7天或更长时间后评估细胞形成细胞集群的情况，这依赖于宿主细胞系和转染筛选效率。 注意：每日进行细胞生长状态的观察时，嘌呤霉素的筛选至少需持续48h，有效浓度嘌呤霉素的筛选周期一般在3 - 10天。 (4) 转移和放置5 - 10个抗性克隆到直径35 mm的培养皿中，用选择培养基继续培养7天。此次富集培养是为日后的细胞毒性实验做准备。